Copelan, EA Trasplante de células madre hematopoyéticas. N. ingl. J.Med. 3541813–1826 (2006).
Cohen, S. et al. Trasplante de células madre hematopoyéticas utilizando sangre de cordón um171 expandida única: un estudio de viabilidad y seguridad de fase 1-2 de un solo brazo. Lanceta Hematol. 7e134–e145 (2020).
Pineault, N. & Abu-Khader, A. Avances en la expansión de células madre de sangre del cordón umbilical y traducción clínica. Exp. hematol. 43498–513 (2015).
Wilkinson, AC & Nakauchi, H. Estabilización de células madre hematopoyéticas in vitro. Opinión actual. Gineta. desarrollo 641–5 (2020).
Gluckman, E. et al. Reconstitución hematopoyética en un paciente con anemia de Fanconi mediante sangre de cordón umbilical de un hermano HLA idéntico. N. ingl. J.Med. 3211174–1178 (1989).
Orkin, SH & Zon, LI Hematopoyesis: un paradigma en evolución para la biología de células madre. Celúla 132631–644 (2008).
Weissman, IL Células madre: unidades de desarrollo, unidades de regeneración y unidades en evolución. Celúla 100157–168 (2000).
Wilkinson, AC, Igarashi, KJ & Nakauchi, H. Autorrenovación de células madre hematopoyéticas in vivo y ex vivo. Nat. Rdo. Gineta. 21541–554 (2020).
Boitano, AE et al. Los antagonistas de los receptores de hidrocarburos arílicos promueven la expansión de las células madre hematopoyéticas humanas. Ciencia 3291345–1348 (2010).
Tarifas, I. et al. Expansión de la sangre del cordón. Los derivados de pirimidindol son agonistas de la autorrenovación de células madre hematopoyéticas humanas. Ciencia 3451509-1512 (2014).
Wagner, JE Jr. et al. El ensayo de fase I/II de células madre hematopoyéticas de sangre de cordón umbilical expandidas StemRegenin-1 respalda la prueba como injerto independiente. Célula Célula Madre 18144–155 (2016).
Bai, T. et al. Expansión de células madre hematopoyéticas humanas primitivas mediante cultivo en un hidrogel zwitteriónico. Nat. Medicina. 251566-1575 (2019).
Gray, W. et al. La activación del receptor tirosina quinasa RET mejora el crecimiento y la potencia de las células madre hematopoyéticas a largo plazo. Sangre 1362535–2547 (2020).
Huang, J., Nguyen-McCarty, M., Hexner, EO, Danet-Desnoyers, G. & Klein, PS Mantenimiento de células madre hematopoyéticas mediante la regulación de las vías Wnt y mTOR. Nat. Medicina. 181778–1785 (2012).
Wilkinson, AC y col. La expansión de células madre hematopoyéticas ex vivo a largo plazo permite el trasplante incondicional. Naturaleza 571117–121 (2019).
Wilkinson, AC, Ishida, R., Nakauchi, H. y Yamazaki, S. Expansión ex vivo a largo plazo de células madre hematopoyéticas de ratón. Nat. Protocolo 15628–648 (2020).
Ieyasu, A. et al. Un sistema de cultivo basado en proteínas completamente recombinantes identifica específicamente los factores de mantenimiento de las células madre hematopoyéticas. representante de células madre 8500–508 (2017).
Seita, J. et al. Lnk regula negativamente la autorrenovación de las células madre hematopoyéticas al modificar la transducción de señales mediada por trombopoyetina. proc. Academia Nacional. ciencia EE.UU 1042349–2354 (2007).
Parque, HJ et al. La diferenciación megacariocítica inducida por citoquinas está regulada por la pérdida de todo el genoma de un programa transcripcional uSTAT. EMBÓ J. 35580–594 (2016).
Yamazaki, S. et al. Las señales de citoquinas moduladas a través de balsas lipídicas imitan las señales de nicho e inducen la hibernación en las células madre hematopoyéticas. EMBÓ J. 253515–3523 (2006).
Miyamoto, K. et al. Foxo3a es esencial para el mantenimiento de la reserva de células madre hematopoyéticas. Célula Célula Madre 1101–112 (2007).
Tadokoro, Y. et al. Spred1 protege la homeostasis hematopoyética contra el estrés sistémico inducido por la dieta. Célula Célula Madre 22713–725 (2018).
Lechman, ER y col. La atenuación de la actividad de miR-126 expande HSC in vivo sin agotamiento. Célula Célula Madre 11799–811 (2012).
Sakurai, M., Takemoto, H., Mori, T., Okamoto, S. y Yamazaki, S. Expansión in vivo de células progenitoras hematopoyéticas humanas funcionales mediante butizamida. En t. J. Hematol. 111739–741 (2020).
Nishimura, T. et al. Uso de alcohol polivinílico para la expansión de células T del receptor de antígeno quimérico. Exp. hematol. 8016–20 (2019).
Ito, M. et al. NOD/SCID/γCnulo ratón: un excelente modelo de ratón receptor para el injerto de células humanas. Sangre 1003175–3182 (2002).
Linn, M. et al. Soluplus® como potenciador de la absorción eficaz de fármacos poco solubles in vitro e in vivo. EUR. J. Pharm. ciencia 45336–343 (2012).
Jin, X., Zhou, B., Xue, L. & San, W. Soluplus(®) micelas como un sistema potencial de administración de fármacos para revertir el tumor resistente. biomedicina Farmacéutico. 69388–395 (2015).
Sudo, K., Yamazaki, S., Wilkinson, AC, Nakauchi, H. y Nakamura, Y. La tasa de hidrólisis del alcohol polivinílico y el peso molecular influyen en la actividad de HSC humana y murina ex vivo. Res. de células madre 56102531 (2021).
Ito, R. et al. Establecimiento de un modelo de alergia humana utilizando ratones NOG transgénicos para IL-3/GM-CSF humanos. J. Immunol. 1912890–2899 (2013).
Tarifas, I. et al. La expresión EPCR marca UM171-CD34 expandido+ células madre de la sangre del cordón umbilical. Sangre 1293344–3351 (2017).
Lehnertz, B. et al. La expresión de HLF define el estado de las células madre hematopoyéticas humanas. Sangre 1382642–2654 (2021).
Aguiló, F. et al. Prdm16 es un regulador fisiológico de las células madre hematopoyéticas. Sangre 1175057–5066 (2011).
Che, JLC et al. Identificación y caracterización de células madre hematopoyéticas expandidas in vitro. Representante de EMBA 23e55502 (2022).
García-Pratt, L. et al. La actividad endolisosomal mediada por TFEB controla el destino de las células madre hematopoyéticas humanas. Célula Célula Madre 281838–1850 (2021).
Liang, R. et al. La restricción de la actividad lisosomal preserva la inactividad y la potencia de las células madre hematopoyéticas. Célula Célula Madre 26359–376 (2020).
Lee-Six, H. et al. Dinámica poblacional de sangre humana normal inferida de mutaciones somáticas. Naturaleza 561473–478 (2018).
Subramanian, A. et al. Análisis de enriquecimiento de conjuntos de genes: un enfoque basado en el conocimiento para interpretar los perfiles de expresión de todo el genoma. proc. Academia Nacional. ciencia EE.UU 10215545–15550 (2005).
Nocka, K. et al. Bases moleculares de mutaciones dominantes negativas y de pérdida de función en el locus de manchas blancas/c-kit murino: W37, Wv, W41 y W. EMBÓ J. 91805–1813 (1990).
Emma, H. et al. Células madre hematopoyéticas de ratón adulto: purificación y ensayos unicelulares. Nat. Protocolo 12979–2987 (2006).
Nogami, W. et al. El efecto de una nueva butizamida de molécula pequeña no peptidil sobre el receptor de trombopoyetina humana y la megacariopoyesis. hematologica 931495–1504 (2008).
Sakurai, M., Ishitsuka, K. y Yamazaki, S. Expansión ex vivo sin citocinas de células madre hematopoyéticas humanas. Protocolo Intercambio (en la prensa).
Kuchimaru, T. et al. Un modelo murino fiable de metástasis ósea mediante la inyección de células cancerosas a través de las arterias caudales. Nat. común 92981 (2018).
Robinson, MD, McCarthy, DJ y Smyth, GK edgeR: un paquete de bioconductores para el análisis de expresión diferencial de datos de expresión génica digital. Bioinformática 26139–140 (2010).
Wu, T. et al. clusterProfiler 4.0: una herramienta de enriquecimiento universal para interpretar datos ómicos. Innovación 2100141 (2021).
Nestorowa, S. et al. Un mapa de resolución de una sola célula de la diferenciación de células progenitoras y madre hematopoyéticas de ratón. Sangre 128e20–e31 (2016).
Hao, Y. et al. Análisis integrado de datos unicelulares multimodales. Celúla 1843573–3587 (2021).